並不是只有高通量用戶適合使用 Precast Gel，其實少量 Western Blot 的使用者，更適合預鑄膠。(現在，請您檢視一下您手邊的 Tris、Glycine 是否已經硬化、受潮、結塊? 歡迎您跟 翰新 索取 Q-PAGE QP4510 試用包。)
一、什麼是 Precast Gel
Precast gel 是由原廠在受控條件下，預先鑄造成型並完成聚合的電泳凝膠，使用者開封即可上樣電泳，無需自行配膠、灌膠或等待聚合。
「方便」，「製程」
二、結構與材料設計（為什麼它穩定）
以 SDS-PAGE precast gel 為例，其核心結構包含：
1️⃣ 凝膠基質
- 聚丙烯醯胺（Polyacrylamide）
- 交聯劑：Bis-acrylamide
- 聚合方式：APS + TEMED（但這一步已由原廠完成）
2️⃣ 濃度設計
- 固定濃度 gel（如 10%、12%）
- Gradient gel（如 4–15%、8–16%）
- 高分子與低分子蛋白可同時兼顧
- 梯度線性由工廠精密控制，人手幾乎不可能穩定重現
3️⃣ Buffer system
- Tris-Glycine
- Tris-Tricine（小分子蛋白）
- Bis-Tris（中性條件、低背景）
不同 buffer 系統影響：
- 蛋白遷移速度
- band sharpness
- 與 downstream（Western blot）相容性
三、Precast vs Hand-cast：
| 面向 | Precast Gel | 手灌 Gel |
|---|---|---|
| 再現性 | ★★★★★ | ★★～★★★ |
| 批次差異 | 極低（QC控管） | 高（人為變因） |
| 操作時間 | 幾乎為零 | 30–60 分 |
| 技術門檻 | 低 | 高 |
| 安全性 | 無接觸 acrylamide | 有神經毒風險 |
| 數據可信度 | 高 | 比較依人而異 |
Precast gel 買的是「數據穩定性」，不是塑膠板。
四、實驗效能層面的實際差異
✅ Band 表現
- 更銳利、對稱
- 低 smearing
- lane-to-lane 一致性高
✅ Western blot 成功率
- gel 厚度、孔型一致 → transfer 更均勻
- 減少「這次又轉不好」的灰色地帶
五、品質控管與法規視角
在 GMP、GLP、IVD、CRO 環境中，precast gel 的價值會被放大：
- 批號可追溯（Lot traceability）
- 原廠 QC 文件
- SOP 可標準化
- 降低 audit 時的變因解釋成本
六、適用情境快速決策指南
| 使用場景 | 建議 |
|---|---|
| 高通量樣品 | ✅ Precast |
| Western blot 常規分析 | ✅ Precast |
| 教學實驗 | ✅ Precast |
Q-PAGE™ TGN Precast Gel, Mini 12 wells, 4–15%（10片/盒）預製梯度凝膠
Q-PAGE™ TGN Precast Gel, Mini 12 wells, 4–15%（10片/盒）
🧪 基本產品資訊（技術總覽）
📦 規格與適配性
- 品名／型號: Q-PAGE™ TGN Precast Gel – Mini (12 wells, 4–15%)
- 數量: 一盒 10 片預鑄凝膠
- 凝膠尺寸（Mini）: 約 10 × 8.3 cm
- 孔數與容積: 12 個槽，每孔約可裝 ~25 µL 樣品
- 濃度範圍（Gradient）: 4% → 15% 聚丙烯酰胺（適用於廣泛分子量的蛋白）
- 緩衝系統: Tris-Glycine（Laemmli 系統）
- 相容電泳槽: 常見的 Bio-Rad 等 Mini SDS-PAGE 系統 通用
⚙️ 主要特性與表現
✅ Ready-to-Use
開箱即用，無需自行配膠或等待聚合，將凝膠安裝到電泳槽即可上樣，提升實驗效率與批次穩定性。
⚡ 快速電泳與清晰分離
經過優化配方，採用 TGN (Tris-Glycine Novel) 公式，使電泳速度提升、分離效果清晰，與傳統 Laemmli 凝膠相似但更快（在高電壓下約可於 ~19 分鐘完成）。
💪 穩定性與適用性
- 室溫運輸穩定，倉儲於 4°C 冷藏可達 ~12 個月（不可冷凍）。
- 對於大多數常見蛋白樣本均可進行有效分離。
📊 使用流程概覽
大致工作流程如下（標準 SDS-PAGE）：
- 預處理：去除凝膠頂部及底部的片膠帶與梳子。
- 裝配電泳槽：將預製凝膠放入電泳槽並填入運行緩衝液。
- 上樣運行：將標準蛋白 ladder 與待測樣品上樣後開始電泳。(記得用 tip 吸取 buffer or ddwater 先沖洗 well)
- 後處理：電泳結束後可直接染色、或進行 Western blot 轉膜等下游分析。
📍 適用場景與效益
這款 Mini 類 預製梯度凝膠（4–15%） 的優點，在於：
- 廣泛分子量範圍 的蛋白都能分離；
- 12 個槽適合中等通量分析；
- 免配膠提高日常實驗運行效率與一致性；
- 適合用於常規 SDS-PAGE、蛋白量測、Western blot 前處理等。
☕ 技術隱喻一下
就像把一片為你定制好曲線的時間效率模板放進電泳槽裡 ——
將過去用手工配膠的繁瑣交給工廠標準化控管，讓實驗室把注意力集中在結果分析，而不是膠的品質波動上。
🧪 Precast Gels 產品一覽（SMOBIO）QP4210、QP4510
🔹 1. Bis-Tris Precast Gels（高解析 / MOPS/MES 緩衝系統）
適合需要解析小到中等分子量蛋白、高分辨率分離的實驗
| 產品型號 | 尺寸 | Wells | %濃度 | 特點 |
|---|---|---|---|---|
| QP2110 | Mini (10×8.3 cm) | 12 | 8% | 固定濃度，清晰分離 |
| QP2120 | Mini | 15 | 8% | 更多泳孔 |
| QP2310 | Mini | 12 | 12% | 解析較高分子量蛋白 |
| QP2320 | Mini | 15 | 12% | 15 泳孔版 |
| QP2510 | Mini | 12 | 4–12% (梯度) | 梯度適合寬分子量範圍 |
| QP2520 | Mini | 15 | 4–12% | 梯度 + 更多泳孔 |
| QP3110 | Midi (10×10 cm) | 12 | 8% | 更大尺寸，更深凝膠 |
| QP3120 | Midi | 15 | 8% | Midi + 更多泳孔 |
| QP3310 | Midi | 12 | 12% | 高解析 Midi |
| QP3320 | Midi | 15 | 12% | Midi × 15 wells |
| QP3510 | Midi | 12 | 4–12% | 梯度 Midi |
| QP3520 | Midi | 15 | 4–12% | 梯度 + 多泳孔 |
🔹 2. TGN (Tris-Glycine Novel) Precast Gels
適合常規 Laemmli SDS-PAGE 分離，跑得快、解析效果好
| 產品型號 | 尺寸 | Wells | %濃度 | 備註 |
|---|---|---|---|---|
| QP4210 | Mini | 12 | 10% | 固定濃度標準 |
| QP4220 | Mini | 15 | 10% | 多孔佈局 |
| QP4510 | Mini | 12 | 4–15% (梯度) | 梯度通用款 |
| QP4520 | Mini | 15 | 4–15% | 梯度 + 多孔 |
| QP5210 | Midi | 12 | 10% | Midi 固定濃度 |
| QP5220 | Midi | 15 | 10% | Midi 多孔 |
| QP5510 | Midi | 12 | 4–15% | Midi 梯度 |
| QP5520 | Midi | 15 | 4–15% | Midi 梯度 + 多孔 |
📌 選購要點
🔎 1. 尺寸選擇
- Mini (10 × 8.3 cm)：通用、兼容 Bio-Rad 等常見系統，適合大部分日常 SDS-PAGE。
- Midi (10 × 10 cm)：更厚、更深，適合大量樣品或更長跑程。
🔎 2. 濃度選擇
- 固定濃度（8%、10%、12%）：當你知道目標蛋白分子量時更穩定。
- 梯度濃度（4–12% / 4–15%）：能同時解析低、中、高分子量區域，更具通用性。
🔎 3. 緩衝系統
- Bis-Tris 系列偏 高解析，適合需要細節分辨的小分子蛋白或複雜樣品。
- TGN (Tris-Glycine) 系列則偏向 常規快速 SDS-PAGE，操作習慣與 Laemmli 系統一致。
📊 SMOBIO Precast Gel FAQ 重點整理
1) 基本產品資訊與選擇
| 問題 | 標準答案 |
|---|---|
| Precast Gel 適合哪些電泳槽？ | Mini (10×8.3 cm) 適用於 Bio-Rad® 等常見系統；Midi (10×10 cm) 適用於 Invitrogen® XCell SureLock、Hoefer SE260 等系統。 |
| 凝膠濃度與孔數有哪些？ | TGN 系列：4–15% (梯度) / 10% (固定)；Bis-Tris 系列：4–12% (梯度) / 8% / 12% (固定)。12 孔與 15 孔皆有。 |
| 每孔可裝樣品體積？ | Mini 12 孔約 25 µL/孔；Mini 15 孔約 22 µL/孔；Midi 12 孔約 40 µL/孔；Midi 15 孔約 28 µL/孔。 |
2) 緩衝液使用與配方
| 使用情況 | 建議緩衝液 & 配方 |
|---|---|
| TGN Precast Gel 跑膠 | Tris-Glycine running buffer：10X 配方 — Tris 30 g + Glycine 144 g + SDS 10 g，加水至 1 L，再稀釋至 1X。 |
| Bis-Tris Precast Gel 跑膠 | MOPS 或 MES running buffer。（10X MOPS: Tris 60.6 g + MOPS 104.6 g + SDS 10 g + EDTA 3 g；10X MES: Tris 60.6 g + MES 97.6 g + SDS 10 g + EDTA 3 g，稀釋至 1X。） |
| 過轉／轉膜使用的緩衝液 | Towbin 轉膜緩衝：10X Tris 30 g + Glycine 144 g，加水至 1 L，稀釋至 1X（含甲醇）；或 Bjerrum Schafer-Nielsen 10X 緩衝配方。 |
3) 操作注意事項
| 操作階段 | 關鍵提示 |
|---|---|
| 開啟凝膠 cassette（Mini） | 用專用開啟器從角落插入撬開，避免對角拔出，防止膠體破損。 |
| 開啟 Midi 版凝膠 cassette | 先從每一邊的角落依序分離塑膠片，再用開啟器將膠片推出；切忌從中間硬拉。 |
| 樣品上樣前準備 | 可先以 ddH₂O 或 1X running buffer 洗一下 wells，避免殘留保存液影響上樣。 |
| 膠片拆除技巧 | 避免對角拉扯；必要時用水或其它適當溶液幫助去除。 |
4) 故障現象與排除建議（精簡版）
| 常見現象 | 可能原因 | 建議解決方式 |
|---|---|---|
| 凝膠變形 / 泡泡 / 漏膠 | 膠曾冷凍或保存溫度錯誤 | 正確儲存於 4°C。 |
| Wells 變形 | Comb 拔除角度不正 | 直拉 comb 並快速取出。 |
| 漏緩衝液 / 跑膠方向錯誤 | 未緊密裝配 cassette；底部膠帶未去除；電泳槽放反 | 重新裝配；去底膠帶；確認 cassette 方向。 |
| band 模糊 / 解析差 | 緩衝液配方錯誤 / 膠過熱 | 使用正確緩衝液與新鮮水；控制電壓。 |
| Western 轉膜後無 band / band 漂失 | 轉膜夾層氣泡、膜與膠接觸不良或 assembly 錯誤 | 清除氣泡；調整夾層順序與連接極性。 |
| 預染 marker 尺寸偏差 | 使用的 prestained marker 未標定 | 建議用未染色 marker 或校正專用 marker。 |
📌 操作流程建議（SOP 原則）
- 取出凝膠，確認沒有破裂或異常白斑（白色印記不影響實驗）。
- 按設備對應方向安裝凝膠 cassette；去除底膠帶與 comb。
- 準備適合的 running buffer（TGN 用 Tris-Glycine；Bis-Tris 用 MOPS/MES）。
- 上樣與運行，觀察進度條泳動情況（根據目的蛋白調整電壓與時間）。
- 運行完成後快速拆除膠片進入後處理流程（染色或轉膜）。